{"id":83638,"date":"2008-01-31T22:53:00","date_gmt":"2008-01-31T22:53:00","guid":{"rendered":"http:\/\/weblogs.madrimasd.org\/\/alimentacion\/archive\/2008\/01\/31\/83638.aspx"},"modified":"2008-01-31T22:53:00","modified_gmt":"2008-01-31T22:53:00","slug":"metodos-rapidos-y-automatizacion-en-microbiologia-alimentaria-i","status":"publish","type":"post","link":"https:\/\/www.madrimasd.org\/blogs\/alimentacion\/2008\/01\/31\/83638","title":{"rendered":"M\u00e9todos r\u00e1pidos y automatizaci\u00f3n en microbiolog\u00eda alimentaria (I)"},"content":{"rendered":"

Hace poco m\u00e1s de un mes tuve la oportunidad de asistir al <\/FONT>Workshop sobre M\u00e9todos R\u00e1pidos y Automatizaci\u00f3n en Microbiolog\u00eda Alimentaria<\/FONT><\/A> que, bajo la direcci\u00f3n de los doctores Marta Capellas y Josep Yuste, se celebra anualmente en la Facultad<\/st1:PersonName> de Veterinaria de la Universidad<\/st1:PersonName> Aut\u00f3noma<\/st1:PersonName> de Barcelona. Se trata de un curso muy interesante que permite adquirir una amplia visi\u00f3n de los m\u00e9todos de detecci\u00f3n e identificaci\u00f3n r\u00e1pida de los microorganismos presentes en los alimentos, as\u00ed como conocer los \u00faltimos avances aplicables al an\u00e1lisis microbiol\u00f3gico en la industria alimentaria.<\/FONT><\/P>

El curso consta de: (i) conferencias impartidas por destacados cient\u00edficos espa\u00f1oles y extranjeros; (ii) presentaciones a cargo de expertos de importantes empresas de microbiolog\u00eda, incluyendo \u201crotaciones\u201d en las que grupos reducidos de participantes en el curso asisten a la demostraci\u00f3n del funcionamiento de equipos y productos; y (iii) dos sesiones pr\u00e1cticas de laboratorio, un taller y una visita a una empresa de Biolog\u00eda Molecular. <\/o:p><\/FONT><\/SPAN><\/P>

<\/v:stroke><\/v:f><\/v:f><\/v:f><\/v:f><\/v:f><\/v:f><\/v:f><\/v:f><\/v:f><\/v:f><\/v:f><\/v:f><\/v:formulas><\/v:path><\/o:lock><\/v:shapetype>\"Dr.<\/FONT><\/v:imagedata><\/v:shape><\/SPAN><\/B><\/P><\/TD><\/TR>

El Dr. Fung durante una de las ponencias del curso<\/o:p><\/FONT><\/SPAN><\/B><\/P><\/TD><\/TR><\/TBODY><\/TABLE>

Entre los magn\u00edficos conferenciantes que intervinieron en el curso, destaca la figura del Dr. Daniel Y. C. Fung<\/A><\/SPAN>, profesor de la Kansas State<\/st1:PersonName> University en Manhattan (Kansas) y director del mundialmente conocido Workshop on Rapid Methods and Automation in Microbiology<\/A><\/SPAN> que se celebra anualmente en la mencionada universidad desde 1980. El Dr. Fung, autoridad internacional en el campo de los M\u00e9todos R\u00e1pidos en Microbiolog\u00eda y autor de m\u00e1s de 700 art\u00edculos cient\u00edficos en la materia, imparti\u00f3 seis interesantes conferencias basadas en su art\u00edculo Rapid Methods and Automation in Microbiology<\/I> (1), cuyos aspectos m\u00e1s destacados presento a continuaci\u00f3n. <\/FONT><\/P>

El desarrollo de m\u00e9todos r\u00e1pidos y automatizados para la detecci\u00f3n, aislamiento, identificaci\u00f3n y enumeraci\u00f3n de microorganismos (y\/o sus metabolitos) relacionados con la alteraci\u00f3n y seguridad de los alimentos es una subdivisi\u00f3n del \u00e1rea de la microbiolog\u00eda aplicada con una importancia cada vez mayor. En este sentido, seg\u00fan investigaciones de mercado realizadas en 2003 por Strategic Consulting Inc.\u00b4s, del total de ensayos microbiol\u00f3gicos realizados por la industria en el mundo (1.136,5 millones), el 58% (660, 5 millones) correspondieron a la industria de la alimentaci\u00f3n (49%) y bebidas (9%). Aproximadamente, el 20% de los an\u00e1lisis se dirigieron a la detecci\u00f3n de los microorganismos pat\u00f3genos Salmonella y Escherichia coli O157:H7 y el 80% restante fueron an\u00e1lisis rutinarios (recuento total, de coliformes, de mohos y de levaduras). A nivel mundial, el porcentaje de ensayos realizado en Europa, Am\u00e9rica del Norte y el resto del mundo fue de un 33% en cada uno de los casos. No obstante, se estima que en un futuro pr\u00f3ximo el porcentaje de ensayos realizados en el resto del mundo podr\u00eda incrementarse hasta el 50% debido a la concienciaci\u00f3n que est\u00e1n experimentando pa\u00edses con econom\u00edas en desarrollo sobre la gran importancia de la seguridad alimentaria (1, 2, 3). As\u00ed por ejemplo, las autoridades sanitarias de China, pa\u00eds que se ha visto envuelto en varias ocasiones en esc\u00e1ndalos debidos a la exportaci\u00f3n de alimentos con condiciones higi\u00e9nico-sanitarias no adecuadas, est\u00e1n tomando las medidas necesarias para asegurar el suministro de alimentos seguros a los m\u00e1s de 10.000 atletas y 3 millones de espectadores que se calcula asistir\u00e1n a los Juegos Ol\u00edmpicos que se celebrar\u00e1n en agosto de este a\u00f1o en Beijing (4). <\/o:p><\/FONT><\/SPAN><\/P>

Los m\u00e9todos microbiol\u00f3gicos \u201cconvencionales\u201d, empleados actualmente en numerosos laboratorios de todo el mundo y establecidos en muchos casos como m\u00e9todos est\u00e1ndares de an\u00e1lisis microbiol\u00f3gico de los alimentos, se caracterizan por ser laboriosos, emplear grandes vol\u00famenes de medios de cultivo y requerir un tiempo considerable para la obtenci\u00f3n y el an\u00e1lisis de los resultados. Por el contrario, los m\u00e9todos r\u00e1pidos requieren un tiempo reducido para la obtenci\u00f3n de los resultados y\/o permiten procesar un n\u00famero elevado de muestras por unidad de tiempo, y son en general f\u00e1ciles de usar, precisos (sensibilidad y especificidad adecuadas y l\u00edmites de detecci\u00f3n bajos) y econ\u00f3micamente rentables (aunque, en algunos casos, pueden requerir una inversi\u00f3n econ\u00f3mica inicial considerable). Conviene destacar que, en la mayor\u00eda de los casos, el empleo de m\u00e9todos r\u00e1pidos no excluye la etapa de enriquecimiento del microorganismo diana ni la necesidad de obtener cultivos puros, as\u00ed como que los resultados positivos obtenidos con m\u00e9todos alternativos (distintos del m\u00e9todo de referencia) no validados deben ser confirmados. Asimismo, es de suma importancia, al igual que en el caso de los m\u00e9todos tradicionales, una adecuada toma y preparaci\u00f3n de las muestras a analizar. En lo que se refiere a este \u00faltimo aspecto, destacan los siguientes avances: (i) para muestras s\u00f3lidas, instrumentos gravim\u00e9tricos que realizan autom\u00e1ticamente las diluciones programadas (<\/FONT><\/SPAN>Dilumat<\/FONT><\/A><\/SPAN>, AES Chemunex; <\/FONT>Dilumacher<\/FONT><\/A>, PBI; <\/FONT>Labpro Gravimetric Diluter<\/FONT><\/A>, Spiral Biotech) y homogeneizadores que funcionan mediante ondas de choque y una intensa agitaci\u00f3n para transferir los microorganismos del alimento al diluyente, produciendo una m\u00ednima destrucci\u00f3n de la muestra (<\/FONT>Pulsifier<\/FONT><\/A>, Microgen); (ii) para muestras l\u00edquidas, sistemas r\u00e1pidos para realizar diluciones seriadas (sistema <\/FONT>Dilucup<\/FONT><\/A>, LabRobots Products AB); (iii) para muestras de superficie, esponjas prehidratadas con un medio de transporte o enriquecimiento dise\u00f1adas para obtener muestras de lugares de dif\u00edcil acceso (<\/FONT>SpongeSicle<\/FONT><\/A> y <\/FONT>Extend-a-Sicle<\/FONT><\/A>, Biotrace International) y el m\u00e9todo \u201cmanos libres\u201d para la obtenci\u00f3n de muestras de la superficie de canales mediante el empleo de cinta adhesiva (5); y (iv) para muestras de aire, instrumentos port\u00e1tiles que aspiran un volumen determinado de aire y recogen los microorganismos en la superficie del agar de placas de contacto para la estimaci\u00f3n de la calidad microbiol\u00f3gica aire (<\/FONT>SAS sampler<\/FONT><\/A>, Bioscience International; <\/FONT>MicroBio Air Sampler<\/FONT><\/A>, Parrett).<\/o:p> <\/FONT><\/SPAN><\/P>

Los m\u00e9todos r\u00e1pidos utilizados en microbiolog\u00eda de los alimentos pueden dividirse en cinco grandes grupos, incluyendo los empleados para el recuento de c\u00e9lulas viables, para la medici\u00f3n de la biomasa, los sistemas miniaturizados y kits de diagn\u00f3stico, los inmunol\u00f3gicos y los gen\u00e9ticos. En la primera parte de este blog se tratan las innovaciones introducidas recientemente en los dos primeros grupos, mientras que en una segunda parte se tratar\u00e1n las referidas a los tres \u00faltimos grupos.<\/o:p><\/FONT><\/SPAN><\/P>

Recuento de c\u00e9lulas viables<\/o:p><\/FONT><\/SPAN><\/B><\/P>

El recuento de c\u00e9lulas viables, tanto de los alimentos como de las superficies en contacto con los mismos y del aire de las industrias alimentarias, es uno de los par\u00e1metros m\u00e1s importantes a la hora de determinar la calidad y seguridad de los alimentos. Tradicionalmente, el recuento de c\u00e9lulas viables se ha realizado mediante el m\u00e9todo est\u00e1ndar de recuento en placa, que, <\/o:p><\/FONT><\/SPAN><\/P>

\"Doble<\/FONT><\/v:imagedata><\/v:shape><\/SPAN><\/B><\/P><\/TD><\/TR>

El \u201cdoble tubo de Fung\u201d, un sistema sencillo y econ\u00f3mico para el crecimiento de microorganismos anaerobios<\/o:p><\/FONT><\/SPAN><\/B><\/P><\/TD><\/TR><\/TBODY><\/TABLE>

aunque sencillo, es laborioso, requiere un volumen considerable de tubos de ensayo y medio de diluci\u00f3n, y espacio para el almacenamiento y la incubaci\u00f3n de las placas de cultivo. En lo que se refiere a la preparaci\u00f3n de placas de cultivo, destacan las siguientes mejoras: aut\u00f3matas para la preparaci\u00f3n y distribuci\u00f3n de medios de cultivo (<\/FONT>Masterclave<\/FONT><\/A>, AES Chemunex); sistemas que incluyen pectina como agente gelificante en lugar de agar, evitando as\u00ed la necesidad de calentar el medio para fundirlo (<\/FONT>Redigel<\/FONT><\/A>, 3M); y medios liofilizados que utilizan como soporte una pel\u00edcula pl\u00e1stica de tama\u00f1o y grosor similar al de una tarjeta de cr\u00e9dito que contiene geles solubles en agua fr\u00eda que se rehidratan al depositar la muestra en su superficie y que requieren un espacio m\u00ednimo para su almacenamiento e incubaci\u00f3n (<\/FONT>Petrifilm<\/FONT><\/A>, 3M), existiendo asimismo instrumentos para la lectura r\u00e1pida y autom\u00e1tica de los resultados (<\/FONT>Lector de placas 3M Petrifilm<\/FONT><\/A>, 3M). En este apartado cabe asimismo destacar el desarrollo de numerosos medios de cultivo cromog\u00e9nicos que acortan el tiempo necesario para la obtenci\u00f3n de resultados (<\/FONT>RAPID\u00b4 Chromogenic Methods<\/FONT><\/A>, Bio-Rad; <\/FONT>BBL CHROMagar<\/FONT><\/A>, BD; <\/FONT>medios cromog\u00e9nicos bioM\u00e9rieux<\/FONT><\/A>; <\/FONT>medios cromog\u00e9nicos AES Chemunex<\/FONT><\/A>). En cuanto a los m\u00e9todos de siembra, existen sembradores autom\u00e1ticos en espiral que reducen o eliminan la necesidad de realizar diluciones seriadas de la muestra (<\/FONT>Autoplate 4000<\/FONT><\/A>, Spiral Biotech; <\/FONT>WASP<\/FONT><\/A>, Don Whitley Scientific Limited) y que facilitan el recuento mediante el empleo de contadores autom\u00e1ticos de colonias (<\/FONT>Q Count<\/FONT><\/A>, Spiral Biotech; <\/FONT>EasyCount2<\/FONT><\/A>, AES Chemunex). Con respecto a la enumeraci\u00f3n de microorganismos, existen sistemas basados en la simplificaci\u00f3n de la t\u00e9cnica del n\u00famero m\u00e1s probable (<\/FONT>NMP<\/FONT><\/A>), que poseen un rango de enumeraci\u00f3n amplio en ausencia de diluciones, tales como el sistema de filtraci\u00f3n <\/FONT>Isogrid\/Neo-Grid<\/FONT><\/A> (Neogen), que emplea una membrana con 1.600 celdillas o \u201ccompartimentos de crecimiento\u201d delimitados por una rejilla hidrof\u00f3bica, y la placa <\/FONT>SimPlate<\/FONT><\/A> (Biocontrol), que permite recuentos de hasta 738 ufc (frente a las 300 ufc de una placa de cultivo convencional). Recientemente se ha miniaturizado y automatizado el m\u00e9todo NMP mediante el empleo de tarjetas de material pl\u00e1stico que contienen 3 grupos de 16 pocillos, con 1 logaritmo de diferencia en volumen para cada grupo de pocillos, y medios de cultivo con indicadores fluorescentes (<\/FONT>Tempo<\/FONT><\/A>, bioM\u00e9rieux). Este sistema disminuye considerablemente la necesidad de reactivos, espacio y tiempo con respecto al m\u00e9todo NMP convencional. Aunque la mayor\u00eda de los m\u00e9todos de recuento mencionados est\u00e1n dise\u00f1ados para la enumeraci\u00f3n de microorganismos aerobios, en los a\u00f1os 80, el Dr. Fung desarroll\u00f3 un m\u00e9todo ingenioso y sencillo para el recuento de microorganismos anaerobios, conocido como \u201cdoble tubo de Fung\u201d, que permite lograr instant\u00e1neamente condiciones de anaerobiosis en el medio de cultivo y que no requiere sistemas generadores de hidr\u00f3geno ni jarras de anaerobiosis (6).<\/o:p><\/FONT><\/SPAN><\/P>

Los m\u00e9todos citados en esta secci\u00f3n facilitan de diversas maneras la realizaci\u00f3n del recuento microbiano y\/o disminuyen el tiempo necesario para la obtenci\u00f3n de resultados. Sin embargo, necesitan un tiempo de incubaci\u00f3n variable para que los microorganismos crezcan y puedan ser detectados y enumerados. Por el contrario, existen m\u00e9todos para la realizaci\u00f3n de recuentos microbianos pr\u00e1cticamente en tiempo real basados en el empleo de colorantes fluorescentes que permiten distinguir c\u00e9lulas vivas de muertas mediante un microscopio de epifluorescencia (<\/FONT>DEFT<\/FONT><\/A>, del ingl\u00e9s Direct Epifluorescent Filter Technique<\/I>), esc\u00e1ner (<\/FONT>ScanRDI<\/FONT><\/A>, AES Chemunex), o cit\u00f3metro de flujo digital (<\/FONT>BactiFlow ALS<\/FONT><\/A>, AES Chemunex). <\/o:p><\/FONT><\/SPAN><\/P>

Medida de la biomasa microbiana<\/o:p><\/FONT><\/SPAN><\/B><\/P>

Puesto que el m\u00e9todo \u201cconvencional\u201d de recuento de microorganismos en placa es muy laborioso, se han desarrollado m\u00e9todos para estimar de manera indirecta el n\u00famero de microorganismos presentes en los alimentos. El desarrollo de dichos m\u00e9todos est\u00e1 \u00edntimamente ligado al de la instrumentaci\u00f3n necesaria para detectar las se\u00f1ales relacionadas con el crecimiento microbiano. El principio en el que se basan estos sistemas es que dichas se\u00f1ales (niveles de ATP, enzimas espec\u00edficas, pH, impedancia, conductancia y capacitancia el\u00e9ctricas, etc.) se modifican paralelamente con el crecimiento microbiano. Conviene destacar que para que las mediciones sean significativas es necesario establecer la correlaci\u00f3n entre estos par\u00e1metros y el recuento de c\u00e9lulas viables. <\/SPAN>. <\/SPAN><\/o:p><\/SPAN><\/FONT><\/P>

\"Bioluminiscencia<\/FONT><\/v:imagedata><\/v:shape><\/SPAN><\/B><\/P><\/TD><\/TR>

La bioluminiscencia del ATP puede emplearse para evaluar la limpieza de las superficies en contacto con los alimentos <\/FONT><\/SPAN><\/B><\/P><\/TD><\/TR><\/TBODY><\/TABLE><\/DIV>

Todas las c\u00e9lulas vivas contienen ATP, que se degrada muy r\u00e1pidamente mediante autolisis al morir las c\u00e9lulas. En presencia de la enzima luciferasa y el sustrato luciferina (procedentes de la luci\u00e9rnaga), ox\u00edgeno y magnesio, el ATP facilita el paso de la luciferina a oxiluciferina, gener\u00e1ndose luz (bioluminiscencia) que puede ser detectada mediante un lumin\u00f3metro. La cantidad de luz emitida en esta reacci\u00f3n es directamente proporcional a la cantidad de ATP presente en la muestra, es decir, al n\u00famero de c\u00e9lulas vivas, y est\u00e1 correlacionada con la biomasa celular (la cantidad de ATP de 1 unidad formadora de colonia \u2013ufc- oscila entre 0,22 y 1,03 fg). Este m\u00e9todo (por ejemplo, el sistema <\/FONT>Promicol<\/FONT><\/A>) puede emplearse para la detecci\u00f3n espec\u00edfica de ATP microbiano en productos l\u00edquidos tales como leche UHT, zumos, postres l\u00e1cteos, etc., en los que es necesario determinar la presencia\/ausencia de microorganismos. No obstante, la principal aplicaci\u00f3n de este principio en la industria alimentaria se encuentra en la monitorizaci\u00f3n de la higiene de superficies. En este caso, la presencia de altos niveles de ATP de cualquier origen (microbiano o no) es indicativa de una limpieza deficiente. En la actualidad, existen numerosos sistemas que utilizan dispositivos del tipo escobill\u00f3n o hisopo para la toma de muestra y lumin\u00f3metros port\u00e1tiles, robustos, sensibles y f\u00e1ciles de utilizar que ofrecen lecturas r\u00e1pidas (en menos de 1 min) del nivel de ATP (<\/FONT>Ultrasnap<\/FONT><\/A> y <\/FONT>systemSURE Plus<\/I><\/FONT><\/FONT><\/A>, Hygiena; <\/FONT>Accupoint<\/FONT><\/A>, Neogen; <\/FONT>Lightning MVP<\/FONT><\/A>, Biocontrol; <\/FONT>Clean-Trace<\/FONT><\/A> y <\/FONT>Uni-Lite<\/FONT><\/A>, 3M) lo que permite aplicar las acciones correctoras establecidas en el plan de An\u00e1lisis de Peligros y Puntos de Control Cr\u00edtico (<\/FONT>APPCC<\/FONT><\/A>) antes de que se contamine el producto. Asimismo, existen sistemas para la detecci\u00f3n r\u00e1pida de restos de prote\u00ednas o az\u00facares en las superficies que act\u00faan como fuente de nutrientes para los microorganismos. Estos sistemas se basan en la reacci\u00f3n de dichos nutrientes con los reactivos presentes en hisopos especiales, lo que origina un cambio de color (reacci\u00f3n semicuantitativa) que puede detectarse visualmente (<\/FONT>PRO-TECT<\/FONT><\/A>, Biotrace International; <\/FONT>PRO-Clean<\/FONT><\/A> y <\/FONT>SpotCheck plus<\/FONT><\/A>, Hygiena; <\/FONT>Clean Test<\/FONT><\/A>, LiofilChem). De manera similar, puede detectarse la presencia de Listeria<\/I> spp. en muestras ambientales de la industria alimentaria mediante el uso de escobillones a los que se les a\u00f1aden antibi\u00f3ticos, sustancias enriquecedoras del crecimiento y compuestos indicadores que cambian de color en aproximadamente 30 h en caso de un resultado positivo (<\/FONT>InSite<\/FONT><\/A>, Hygiena; <\/FONT>Listeria superficies PDX-LIB<\/FONT><\/A>\/Enviroswab<\/FONT><\/A>, Paradigm Diagnostics\/Tecra). Adem\u00e1s, existen otros sistemas para la detecci\u00f3n del crecimiento microbiano que se basan en el empleo de instrumentos m\u00e1s o menos sofisticados para la monitorizaci\u00f3n continua de los cambios de color del medio de cultivo relacionados con la actividad metab\u00f3lica microbiana y que permiten obtener resultados en pocas horas (<\/FONT>BacT\/Alert 3D<\/FONT><\/A>, bioM\u00e9rieux; <\/FONT>Soleris<\/FONT><\/A>, Neogen). <\/o:p><\/FONT><\/SPAN><\/P>

Otro grupo de t\u00e9cnicas para la medida de la biomasa son las basadas en la detecci\u00f3n de cambios en la conductividad el\u00e9ctrica y la resistencia del medio de cultivo producidas como consecuencia del metabolismo de nutrientes de gran tama\u00f1o a mol\u00e9culas de menor tama\u00f1o y qu\u00edmicamente m\u00e1s activas durante el crecimiento microbiano (<\/FONT>Bactometer<\/FONT><\/A>, bioM\u00e9rieux; <\/FONT>RABIT<\/FONT><\/A>, Don Whitley Scientific Limited). Puesto que se conoce que para que estos cambios tengan lugar debe alcanzarse una poblaci\u00f3n cr\u00edtica de aproximadamente 106 <\/SUP>ufc\/g, es posible estimar la poblaci\u00f3n inicial de la muestra a partir del tiempo necesario para la detecci\u00f3n de dichos cambios. <\/o:p><\/FONT><\/SPAN><\/P>

Bibliograf\u00eda<\/SPAN><\/B><\/o:p><\/SPAN><\/FONT><\/P>

  1. Fung, D.Y.C. (2002). Rapid Methods and Automation in Microbiology. <\/SPAN>Comprehensive Reviews<\/SPAN><\/I> in Food Science and Food Safety<\/SPAN><\/SPAN><\/I>, 1: 3-22.<\/o:p><\/SPAN><\/FONT><\/LI>
  2. An\u00f3nimo (2004). Fung\u00b4s forecast on rapid and automated methods: where are we now? Food Safety Magazine<\/I>, agosto-septiembre: 24-31, 60.<\/o:p><\/FONT><\/SPAN><\/LI>
  3. Yuste, J., D.Y.C. Fung y M. Capellas (2007). M\u00e9todos r\u00e1pidos y automatizaci\u00f3n en microbiolog\u00eda alimentaria. <\/SPAN>Alimentaria<\/SPAN><\/I>, mayo 07, 78-80.<\/o:p><\/SPAN><\/FONT><\/LI>
  4. Chambers, H. (2007). Invitrogen strives for gold medal performance at Beijing Olympics. San Diego<\/I><\/st1:place><\/st1:City> Business Journal<\/I>. <\/o:p><\/FONT><\/SPAN><\/LI>
  5. Fung, D. Y. C., L. K. Thompson, B. A. Crozier-Dodson y C. L. Kastner (2000). Hands-free \u201cPop-up\u201d adhesive type method for microbial sampling of meat surfaces. Journal of Rapid Methods and Automation in Microbiology<\/I>, 8(3): 209-217.<\/o:p><\/FONT><\/SPAN><\/LI>
  6. Fung, D.Y.C. y C.M. Lee (1981). <\/SPAN>Double-tube anaerobic bacteria cultivation system. Food Science,<\/I> 7: 209-213.<\/o:p><\/SPAN><\/FONT><\/LI><\/OL>

    Nota<\/SPAN><\/B>: La informaci\u00f3n contenida en este art\u00edculo se basa en las referencias citadas en la Bibliograf\u00eda<\/st1:PersonName> y en el manual del \u201cVI Workshop sobre M\u00e9todos R\u00e1pidos y Automatizaci\u00f3n en Microbiolog\u00eda Alimentaria\u201d (Bellaterra, 20-23 noviembre de 2007). Los nombres de productos e instrumentos comerciales y empresas se citan \u00fanicamente a t\u00edtulo informativo y no implican en ning\u00fan caso la recomendaci\u00f3n expresa de un producto determinado frente a otros de caracter\u00edsticas similares. <\/o:p><\/SPAN><\/FONT><\/P>

    Carmen Herranz Sorribes
    <\/SPAN><\/B>    Departamento de Nutrici\u00f3n, Bromatolog\u00eda y Tecnolog\u00eda de los Alimentos<\/SPAN><\/A><\/SPAN><\/FONT>
    Facultad de Veterinaria
    Universidad Complutense de Madrid<\/FONT><\/SPAN><\/P>

     <\/P><\/p>\n","protected":false},"excerpt":{"rendered":"

    Hace poco m\u00e1s de un mes tuve la oportunidad de asistir al Workshop sobre M\u00e9todos R\u00e1pidos y Automatizaci\u00f3n en Microbiolog\u00eda Alimentaria que, bajo la direcci\u00f3n de los doctores Marta Capellas y Josep Yuste, se celebra anualmente en la Facultad de Veterinaria de la Universidad Aut\u00f3noma de Barcelona. Se trata de un curso muy interesante que permite adquirir una amplia visi\u00f3n de los m\u00e9todos de detecci\u00f3n e identificaci\u00f3n r\u00e1pida de los microorganismos presentes en los alimentos, as\u00ed como conocer los \u00faltimos avances aplicables al an\u00e1lisis microbiol\u00f3gico en la industria alimentaria.<\/p>\n","protected":false},"author":40,"featured_media":0,"comment_status":"open","ping_status":"open","sticky":false,"template":"","format":"standard","meta":{"ngg_post_thumbnail":0},"categories":[1],"tags":[],"blocksy_meta":{"styles_descriptor":{"styles":{"desktop":"","tablet":"","mobile":""},"google_fonts":[],"version":4}},"aioseo_notices":[],"yoast_head":"\nM\u00e9todos r\u00e1pidos y automatizaci\u00f3n en microbiolog\u00eda alimentaria (I) - Seguridad Alimentaria y Alimentaci\u00f3n<\/title>\n<meta name=\"robots\" content=\"index, follow, max-snippet:-1, max-image-preview:large, max-video-preview:-1\" \/>\n<link rel=\"canonical\" href=\"https:\/\/www.madrimasd.org\/blogs\/alimentacion\/2008\/01\/31\/83638\" \/>\n<meta property=\"og:locale\" content=\"es_ES\" \/>\n<meta property=\"og:type\" content=\"article\" \/>\n<meta property=\"og:title\" content=\"M\u00e9todos r\u00e1pidos y automatizaci\u00f3n en microbiolog\u00eda alimentaria (I) - Seguridad Alimentaria y Alimentaci\u00f3n\" \/>\n<meta property=\"og:description\" content=\"Hace poco m\u00e1s de un mes tuve la oportunidad de asistir al Workshop sobre M\u00e9todos R\u00e1pidos y Automatizaci\u00f3n en Microbiolog\u00eda Alimentaria que, bajo la direcci\u00f3n de los doctores Marta Capellas y Josep Yuste, se celebra anualmente en la Facultad de Veterinaria de la Universidad Aut\u00f3noma de Barcelona. 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